M. Benedetta Mattei CURRICULUM VITAE Nata a Firenze l`8

M. Benedetta Mattei
CURRICULUM VITAE
Nata a Firenze l’8 settembre 1968.
Residente a Roma in Via Pietro Giannone 27 - 00195
Recapiti telefonici:
06 49917914-7796
e-mail: [email protected]
FORMAZIONE
1994: si laurea in Chimica Industriale presso l’Università di Roma Sapienza con voti 110/110 e lode,
discutendo la tesi: “Biosintesi e caratterizzazione del poli(-D-glutammato da Bacillus licheniformis”.
1994- 1996: svolge attività di ricerca nell’ambito del progetto CEE “Optimization of texture in heat
processed fruit” presso il Dipartimento di Biologia Vegetale dell’Università di Roma Sapienza.
1996- 1999: frequenta il corso di Dottorato di Ricerca in Scienze Chimiche presso l’Università di Roma
Sapienza. Consegue il titolo di Dottore di Ricerca discutendo la tesi: “Study of the structure-function
relationship of the enzyme polygalacturonase and its inhibiting proteins”
1999- 2000: vince una borsa di studio dell’Istituto Pasteur – Fondazione Cenci Bolognetti per ricerche
all’estero e si reca presso il Protein Research Group, University of Southern Denmark/ Odense University,
Danimarca.
2001- 2002: vincitrice di un assegno di ricerca, svolge attività di ricerca presso il Dipartimento di Biologia
Vegetale dell’Università di Roma Sapienza.
1 marzo 2002: prende servizio come ricercatore universitario presso l’Università di Roma Sapienza, polo di
Latina, sottosettore BIO/04 - Fisiologia vegetale.
2010: ottiene l’idoneità al ruolo di professore di II fascia per il settore scientifico-disciplinare BIO/04
Fisiologia Vegetale.
2012: prende servizio come professore di II fascia per il settore scientifico-disciplinare BIO/04 Fisiologia
Vegetale presso il Dipartimento di Biologia e Biotecnologie dell’Università di Roma Sapienza.
ATTIVITA’ DIDATTICA
Negli anni 2001-2003 ha avuto l’affidamento del corso di Fisiologia e Biochimica Vegetale, e negli anni
2002-2009 del corso di Biotecnologie Vegetali, entrambi per il Corso di Laurea in Biotecnologie AgroIndustriali dell’Università di Roma Sapienza, polo di Latina.
Per gli anni 2003-2008 ha avuto l’affidamento di un modulo del corso di Proteomica per il Corso di Laurea
Specialistica in Biotecnologie Genomiche dell’Università di Roma “La Sapienza” (1 CFU).
Per gli anni accademici dal 2003 al 2009 ha avuto l’affidamento del Modulo di Proteomica del corso
integrato di Genomica e Proteomica per il Corso di Laurea Specialistica in Biotecnologie Industriali e
Agro-Alimentari dell’Università di Roma “La Sapienza”, polo di Latina (4 CFU).
Negli anni accademici 2008-2014 ha avuto l’affidamento del corso di Ecofisiologia e proteomica vegetale
per il Corso di Laurea Magistrale in Biotecnologie Industriali e Ambientali dell’Università di Roma
Sapienza (6 CFU).
Negli anni accademici 2012-2014 ha avuto l'affidamento del Modulo di Elementi di fisiologia vegetale dei
corsi di Fisiologia generale con elementi di fisiologia vegetale per i Corsi di Laurea Triennali in Scienze
Naturali e Scienze Ambientali.
Dal 2002 ad oggi è stato relatore di: 7 studenti del corso di laurea triennale in Biotecnologie AgroIndustriali, 4 studenti del corso di laurea triennale in Biotecnologie Interfacoltà, 2 studenti del corso di
laurea Magistrale in Biotecnologie Industriali e Agro-Alimentari, 3 studenti del corso di laurea Magistrale in
Biotecnologie Industriali e Ambientali, 1 studente del corso di laurea Magistrale in Biologia Cellulare,
supervisore di 2 dottorandi e 3 postdoc Marie Curie.
Dal 2002 al 2009 ha fatto parte del Collegio dei Docenti del Dottorato in Biotecnologie Vegetali
dell’Università della Tuscia, Viterbo.
Nel 2010-2011 ha fatto parte del Collegio dei Docenti del Dottorato in Scienze Botaniche dell’Università di
Roma Sapienza.
Dal 2011 fa parte del Collegio dei Docenti del Dottorato in Biologia Cellulare e dello Sviluppo
dell’Università di Roma Sapienza.
ATTIVITA’ SCIENTIFICA
Lavora a progetti di ricerca riguardanti le interazioni pianta-patogeno e la struttura e funzione della parete
cellulare vegetale.
Dal 2008, come partecipante al progetto ERC Advanced Grant “Exploiting the saccharification potential
of pathogenic microorganisms to improve biofuel production from plants”, coordinato dal Prof. F.
Cervone, ha lavorato all’allestimento di nuove piattaforme analitiche per l’analisi proteomica shotgun e per
lo studio dettagliato dei componenti della parete cellulare vegetale. I principali progetti svolti in questo
ultimo periodo hanno riguardato:
- Analisi proteomica delle risposte indotte da oligogalatturonidi (OG) in piante di Arabidopsis thaliana:
lo scopo di questa ricerca è di identificare le proteine coinvolte nelle risposte agli OG per dissezionare la
via di segnalazione che conduce all’attivazione delle risposte di difesa. La ricerca presta una particolare
attenzione alle proteine localizzate sulla membrana plasmatica, e alle modifiche post-traduzionali, in
particolare la fosforilazione. Le proteine espresse ex novo o quelle modificate in seguito a trattamento con
OG vengono identificate mediante spettrometria di massa e il loro ruolo viene ulteriormente studiato e
caratterizzato attraverso approcci di genetica inversa.
Questa analisi ha permesso l’identificazione di nuove proteine coinvolte nella percezione degli OG e
nell’induzione delle risposte di difesa, potenzialmente utili come marcatori molecolari associati alla
resistenza a patogeni.
- Caratterizzazione della parete cellulare vegetale in frutti di pomodoro transgenici alterati nella biosintesi di
carotenoidi (in collaborazione con il laboratorio di G. Giuliano, ENEA);
- Analisi proteomica subcellulare di reticolo endoplasmatico e Golgi durante la maturazione del frutto di
pomodoro:
tecnologie di analisi proteomica subcellulare vengono applicate per determinare i profili di proteine
espresse lungo la via di secrezione durante l’ontogenesi e la maturazione della bacca di pomodoro. I
principali obiettivi sono: 1) identificare le proteine dell’ER e Golgi che sono espresse in modo differenziale
durante i diversi stadi di sviluppo della bacca; 2) identificare i complessi sopramolecolari nel Golgi; 3)
integrare i risultati dell’analisi proteomica con le informazioni sui profili di espressione genica ottenuti
mediante analisi di microarray. Un’attenzione particolare viene posta sulle proteine che intervengono nella
sintesi e nella modificazione delle pareti cellulari.
ATTIVITÀ DI REVISIONE E VALUTAZIONE
E' impegnata in attività di revisione per la valutazione di progetti di ricerca per le seguenti istituzioni:
MIUR, Italy
Binational Agricultural Research and Development Fund United States – Israele
National Research Foundation, South Africa
E’ da diversi anni impegnata in attività di revisione di lavori inviati a riviste scientifiche internazionali.
quali: Proteomics, Molecular and Cellular Proteomics, Journal of Proteomics, Plant Physiology, Journal
of Plant Phisiology, Molecular Plant-Microbe Interactions, Plant Cell and Tissue Culture, Fungal
Biology, Plant Molecular Biology.
COMUNICAZIONI ORALI A CONGRESSI

XI Convegno Nazionale “Proteine ‘96”. 29-31/05/1996, Siena, Italy. Analysis of the interaction
between Phaseolus PGIP and fungal endopolygalacturonases using biosensor technology.

BIAseminar Tour, Milano 5/11/1996 e Roma 6/11/1996. Use of BIA technology to study the
interaction between Phaseolus PGIP and fungal endopolygalacturonases.

10 ° incontro su “Aspetti molecolari e fisiologici delle Interazioni pianta –patogeno”. 24-25 September
1998 Potenza, Italy. The molecular basis of specificity of the recognition between Polygalacturonaseinhibiting Protein (PGIP) and fungal polygalacturonases.

The Giovanni Armenise - Harvard Foundation Fourth Annual Symposium, Bretton Woods, New
Hampshire June 19-22, 2000. Structural studies on a fungal pathogenicity factor.

Proteomics Seminar, Berlin, London, Paris March 27-31, 2001. Biacore: A powerful combination:
Surface Plasmon Resonance (SPR) based biosensors and MS.

ESF Workshop “Proteomics: focus on protein interaction”, 11-13 May, 2001, Frascati, Italy. The
combination of Surface Plasmon Resonance (SPR) biosensors and mass spectrometry

4th Carbohydrate Bioengineering Meeting, June 10-13, 2001, Stockholm, Sweden. Studies on PGIP and
PMEI plant inhibitors of cell wall modifying enzymes

Convegno su “Proteomics: tecnologie per la caratterizzazione del proteoma e lo studio delle interazioni
proteina-proteina”, 26 October, 2001, Milano, Italy. Combinazione BIA-MS per l’identificazione di
nuovi ligandi e la caratterizzazione di domini di interazione.

The Giovanni Armenise - Harvard Foundation Sixth Annual Symposium, June 27-30, 2002, Marriott
Frenchman's Reef, St. Thomas, USVI. Structural requirements of the PG-PGIP interaction in plant
defence against fungi.
XI International Congress on Molecular Plant-Microbe Interactions. July 18-27, 2003, St. Petersburg,
Russia. Structural studies on fungal endopolygalacturonases and their inhibitors PGIPs.


8th International Congress on Amino Acids and Proteins. 5-9
Proteomic analysis of plant-pathogen interactions.

5° Convegno FISV. 10- 13 October, 2003, Rimini, Italy. The 3-D structure of PGIP (polygalacturonase
inhibiting protein), a leucine-rich repeat protein involved in plant defense.

X Plant Cell Wall Meeting. 29 August- 3 September, 2004, Sorrento (Italy). The 3-D structure of PGIP
reveals a binding site mediating interaction with pectins.

International Workshop “Proteomics in translational research”. 13-14 November, 2004, Rome (italy).
Proteomic studies of plant-pathogen interactions in Arabidopsis thaliana.

1st Italian BIAcore User Meeting, Siena, Italy, November 21-22, 2006. Biomolecular interaction
analysis and mass spectrometry to study protein-protein interactions involved in plant growth and
defence.

I Convegno SIBV (Società Italiana di Biologia Vegetale), Settembre 2009, Verona, Italy. Study of the
oligogalacturonide signalling pathway using proteomic strategies and in vitro and in vivo affinity fishing
using derivatized elicirtors.

Convegno ItPA (Italian Proteomic Association), Giugno 2010, Firenze, Italy. Subcellular proteomic
analysis of enriched ER and Golgi fractions during tomato fruit ripening.

II Convegno SIBV (Società Italiana di Biologia Vegetale), Luglio 2010, Roma, Italy. Proteomic study of
the dynamics of Er and Golgi during tomato fruit ripening.
September, 2003, Rome (Italy).
FINANZIAMENTI:
 Partecipante al progetto PRIN-1999 “Manipulation of redox signalling systems in plants to engineer
resistance to pathogens”, importo € 57.327.

Partecipante al progetto PRIN-2002 “Improvement of plant resistance to pathogens through the
enhancement of the natural defense mechanisms”, importo € 45.000.

Titolare del finanziamento MURST giovani ricercatori dal titolo “Analisi proteomica delle risposte
agli oligogalatturonidi in Arabidopsis thaliana”. Periodo: maggio 2002- aprile 2003. Importo: €
10,000.

Principal Investigator nel Marie Curie Research Training Network dal titolo “Functional Genomics
for Biogenesis of the Plant Cell Wall”. Periodo: 2005-2008. Importo: € 180,000.

Responsabile di unità di ricerca e Coordinatore Scientifico del Programma di ricerca. PRIN 2006
dal titolo “Studio della resistenza basale e indotta verso patogeni fungini nella vite mediante analisi
su larga scala del proteoma”. Periodo: febbraio 2007-gennaio 2009. Importo del cofinanziamento
MIUR assegnato all'unità di ricerca : € 37,500.

Partecipante al progetto FIRB ERA-PG “RLP- and RLK-mediated innate immune responses in
Arabidopsis and tomato triggered by pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) and avirulence
factors (Avrs)”, importo € 257.800.

Partecipante al progetto ERC Advanced Grant “Exploiting the saccharification potential of pathogenic
microorganisms to improve biofuel production from plants”, importo € 2.100.000.

Subcontractor del coordinatore del progetto Prof. Quirico Migheli. Progetti settore Biotecnologie e
Nanotecnologie “Promozione della ricerca scientifica e dell’innovazione tecnologica in Sardegna”.
Titolo del progetto: SALUDE E TRIGU ‐ Nuove strategie di protezione a basso impatto
ambientale dei cereali in Sardegna e salvaguardia degli standard di sicurezza alimentare mediante
inibitori naturali e naturali‐simili della biosintesi di micotossine prodotte da Fusarium Importo
finanziato al progetto (Det. Num 8029/1122 del 22/9/2011): € 192,000.
PUBBLICAZIONI SCIENTIFICHE
1) Crescenzi V., D’Alagni M., Dentini M., Mattei B. (1996) Aqueous solution properties of bacterial
poly--D-glutamate. Hydrogels and Biodegradable Polymers for Bioapplications (Eds R.M. Ottenbrite, S.J. Huang
and K. Park) American Chemical Society Sym. Ser. 627, Washington DC, pp 233-242.
2) Caprari C., Mattei B., Basile M.L., Salvi G., Crescenzi V., De Lorenzo G and Cervone F. (1996).
Mutagenesis of endopolygalacturonase from Fusarium moniliforme: histidine residue 234 is critical for
enzymatic and macerating activities and not for binding to polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP).
Molecular Plant-Microbe Interactions, 9 (7): 617-624.
3) Mattei B., Salvi G., Caprari C., De Lorenzo G., Crescenzi V. and Cervone F. (1996). Analysis of the
interaction between PGIP from Phaseolus vulgaris L. and fungal endopolygalacturonases using biosensor
technology. In: “Pectins and Pectinases” (eds. F. Voragen and J. Visser). Kluwer Academic Publishers, pp.
775-782.
4) Cervone F., De Lorenzo G., Aracri B., Bellincampi D., Caprari C., Clark A.J., Desiderio A., Devoto
A., Leckie F., Mattei B., Nuss L., Salvi G. (1996). The role of polygalacturonase, PGIP and pectin
oligomers in fungal infection. In: “Pectins and Pectinases” (eds. F. Voragen and J. Visser). Kluwer Academic
Publishers, pp. 191-205.
5) Cervone F., De Lorenzo G., Aracri B., Bellincampi D., Caprari C., Devoto A., Leckie F., Mattei B.,
Nuss L, Salvi G. (1996). The PGIP (polygalacturonase-inhibiting protein) family: extracellular proteins
specialized for recognition. In “Biology of Plant-Microbe Interactions Vol. 4” (eds G. Stacey, B. Mullin and P.
Gresshoff), pp. 93-98.
6) Desiderio A.*, Aracri B.*, Leckie F.*, Mattei B.*, Salvi G., van Roekel J.S.C., Tigelaar H.,
Baulcombe D., Melchers L.S., De Lorenzo G. and Cervone F. (1997). Polygalacturonase-inhibiting proteins
(PGIPs) with different specificities are expressed in Phaseolus vulgaris L. Molecular Plant-Microbe Interactions, 10
(7): 852-860. *I primi quattro autori hanno contribuito in uguale misura a questo lavoro e sono da
considerarsi primi autori.
7) Cervone F., De Lorenzo G., Aracri B., Bellincampi D., Capone I., Caprari C., Clarck A.J., Devoto
A., Leckie F., Mattei B., Nuss L, Salvi G. (1998). Molecular analysis of the polygalacturonase-inhibiting
protein (pgip) gene family in Phaseolus vulgaris L. In “Molecular Genetics of Host-Specific Toxins in Plant Disease”
(eds K. Kohmoto & O.C. Yoder). Kluwer Academic Publishers, pp. 297-307.
8) Federici L., Mattei B., Caprari C., Savino C., Cervone F., Tsernoglou D. (1999) Crystallization and
preliminary X-ray diffraction study of the endo-polygalacturonase from Fusarium moniliforme. Acta Crystallogr
D Biol Crystallogr, 55 ( Pt 7):1359-61.
9) Franconi R., Roggero P., Pirazzi P., Arias F.J., Desiderio A., Bitti O., Pashkoulov D., Mattei B.,
Bracci L., Masenga V., Milne R.G., Benvenuto E. (1999). Functional expression in bacteria and plants of an
scFv antibody fragment against tospoviruses. Immunotechnology 3-4:189-201
10) Fuglsang A.T., Visconti S., Drumm K., Jahn T., Stensballe A., Mattei B., Jensen O.N., Aducci P.,
Palmgren M.G. Binding of 14-3-3 protein to the plasma membrane H(+)-ATPase AHA2 involves the
three C-terminal residues Tyr(946)-thr-Val and requires phosphorylation of thr(947). (1999). J Biol Chem,
274(51):36774-80
11) Leckie F, Mattei B., Capodicasa C, Hemmings A, Nuss L, Aracri B, De Lorenzo G, Cervone F
(1999) The specificity of polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP): a single amino acid substitution in
the solvent-exposed beta-strand/beta-turn region of the leucine-rich repeats (LRRs) confers a new
recognition capability. EMBO J.,18(9):2352-63.
12) Leech A., Mattei B., Federici L, De Lorenzo G. and Hemmings A. (2000). Preliminary X-ray
chrystallographic analysis of a plant defence protein, the polygalcturonase-inhibiting protein from Phaseolus
vulgaris L. Acta Crystallogr D Biol Crystallogr 56: 98-100.
13) Verzili D., Zamparelli C., Mattei B., Noegel A.A., Chiancone E. (2000). The sorcin-annexin VII
calcium-dependent interaction requires the sorcin N-terminal domain. FEBS Letters,.471: 197-200.
14) De Lorenzo G., Cervone F., Bellincampi D., Capodicasa C., Caprari C., Federici L., Ferrari S., Giuli
P., Laurenzi M., Mattei B., Raiola A, Salvi G., Sicilia F., Vairo D., Zabotina O. (2000). Structure-function
studies on the leucine-rich repeat polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP). In “Biology of PlantMicrobe Interactions. Vol.2” (eds P.J.G.M. de Wit, T. Bisseling & J. Stiekema). Kluwer Academic
Publishers, pp. 126-130.
15) Cervone F., Laurenzi M., Mattei B., Bellincampi D., De Lorenzo G. (2000) I sistemi di difesa delle
piante. In: XXVI Seminario sulla Evoluzione Biologica e i grandi problemi della Biologia. Le biotecnologie. Contributi
del centro Linceo Interdisciplinare “Beniamino Segre”, 101. Accademia Nazionale dei Lincei, Roma: 145162.
16) Mattei B., Bernalda M. S., Federici L., Roepstorff P., Cervone F. and Boffi A. (2001). Secondary
structure and post-translational modifications of the leucine-rich repeat protein PGIP (polygalacturonaseinhibiting protein) from Phaseolus vulgaris. Biochemistry, 40(2): 569-576.
17) Luderer R., Rivas S., Nürnberger T., Mattei B., Zuidema D., De Lorenzo G., Jones J.D.G., De Wit
P.J.G.M. and Joosten M.H.A.J. (2001). No evidence for binding between resistance gene product Cf-9 of
tomato and avirulence gene product AVR9 of Cladosporium fulvum. Mol. Plant Microbe Interact. 14(7):867-76.
18) Federici* L., Caprari* C., Mattei* B., Savino C., Di Matteo, A., De Lorenzo G., Cervone F. and
Tsernoglou D. (2001). Structural Requirements of Endopolygalacturonase for the Interaction with PGIP
(Polygalacturonase Inhibiting Protein). Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 98(23):13425-30. *I primi tre autori
hanno contribuito in uguale misura a questo lavoro e sono da considerarsi primi autori.
19) B. Mattei, F. Cervone, P. Roepstorff (2001). The interaction between endopolygalacturonase from
Fusarium moniliforme and PGIP from Phaseolus vulgaris studied by surface plasmon resonance and mass
spectrometry. Comparative and Functional Genomics, 2: 359–364.
20) De Lorenzo G., Capodicasa C., Caprari C., Federici L., Ferrari S., Mattei B., Raiola A, Sicilia F.,
Vairo D., Devoto A., Cervone F. (2002). Structure-function and molecular studies on fungal
polygalacturonases and their inhibitors PGIPs. In “Biology of Plant-Microbe Interactions. Vol.3” (eds S.A.
Leong, C. Allen and E.W. Triplett), International Society for Molecular Plant-Microbe Interactions, pp. 4651.
21) Di Matteo, A, Federici L., Mattei B., Salvi G., Johnson A.K., Savino C., De Lorenzo G.,
Tsernoglou D. and Cervone F. (2003). The crystal structure of PGIP (polygalacturonase-inhibiting
protein), a leucine-rich repeat protein involved in plant defense. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 100(17):1012428.
22) B. Mattei, J. Borch P. Roepstorff (2004) The combination of biomolecular interaction analysis and
mass spectrometry. Anal Chem., 76(1):19A-25A.
23) De Lorenzo G., D’Ovidio R., Ferrari S., Raiola A, Di Matteo A. and Mattei B. (2004). Insights into
plant defence strategies by studying PGIPs, polygalacturonases and oligogalacturonides. In “Biology of PlantMicrobe Interactions. Vol.4” (eds I. Tikhonovich, B. Lugtenberg and N. Provorov), International Society for
Molecular Plant-Microbe Interactions, pp. 233-236.
24) D'Ovidio R, Mattei B, Roberti S, Bellincampi D. (2004) Polygalacturonases, polygalacturonaseinhibiting proteins and pectic oligomers in plant-pathogen interactions. Biochim Biophys Acta., 1696(2):23744.
25) Raiola A, Camardella L, Giovane A, Mattei B, De Lorenzo G, Cervone F, Bellincampi D. (2004)
Two Arabidopsis thaliana genes encode functional pectin methylesterase inhibitors. FEBS Lett., 557(13):199-203.
26) Capodicasa C, Vairo D, Zabotina O, McCartney L, Caprari C, Mattei B, Manfredini C, Aracri B,
Benen J, Knox JP, De Lorenzo G, Cervone F. (2004). Targeted modification of homogalacturonan by
transgenic expression of a fungal polygalacturonase alters plant growth. Plant Physiol. 135(3):1294-304.
27) Ciardiello M. A., Tamburrini M., Tuppo L., Carratore V., Giovane A., Mattei B., Camardella L.
(2004). Pectin Methylesterase from Kiwi and Kaki Fruits: Purification, Characterization, and Role of pH in
the Enzyme Regulation and Interaction with the Kiwi Proteinaceous Inhibitor. J. Agr. Food Chem. 52 (25):
7700-7703.
28) Mattei B., Galletti R., Manfredini C., Pontiggia D., Salvi G., Spadoni S., Caprari C., Ferrari S.,
Bellincampi D., Cervone F., De Lorenzo G.. (2005). Recognition and signalling in the cell wall: the case of
endopolygalacturonase, PGIP and oligogalacturonides. Plant Biosystems. 139(1): 24 – 27.
29) Sicilia F., Mattei B., Cervone F., Bellincampi D., De Lorenzo G. (2005). Characterization of a
membrane-associated apoplastic lipoxygenase in Phaseolus vulgaris L. Biochim Biophys Acta, 1748 (1): 9 – 19.
30) Brutus A., Reca I.B., Herga S., Mattei B., Puigserver A., Chaix J.C., Juge N., Bellincampi D.,
Giardina T. (2005). A family 11 xylanase from the pathogen Botrytis cinerea is inhibited by plant
endoxylanase inhibitors XIP-I and TAXI-I. Biochem. Biophys. Res. Comm. 337(1): 160-166.
31) Ferrante P., Masci S., D'Ovidio R., Lafiandra D., Volpi C., Mattei B. (2006). A proteomic approach
to verify in vivo expression of a novel gamma-gliadin containing an extra cysteine residue. Proteomics, 6(6):
1908-1914.
32) Spadoni S., Zabotina O., Di Matteo A., Mikkelsen J., Cervone F., De Lorenzo G., Mattei* B., and
Bellincampi D. (2006). Polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP) interacts with pectin through a binding
site formed by four clustered residues of arginines and lysine. Plant Physiol., 141(2):557-64. * Corresponding
author.
33) Casasoli M., Meliciani I., Cervone F., De Lorenzo G., Mattei B. (2007) Oligogalacturonide-induced
changes in the nuclear proteome of Arabidopsis thaliana. Int. J. Mass Spec., 268:277-283.
34) Reverberi M., Betti C., Fabbri A.A., Zialic S., Spadoni S., Mattei B., Fanelli C. (2008). A role for
oxidative stress in the Citrus limon/Phoma tracheiphila interaction.Plant Pathology, 57(1):92-102.
35) Casasoli M, Spadoni S, Lilley KS, Cervone F, De Lorenzo G, Mattei B. (2008). Identification by 2D DIGE of apoplastic proteins regulated by oligogalacturonides in Arabidopsis thaliana. Proteomics,
8(5):1042-54.
36) Spinelli F, Mariotti L, Mattei B, Salvi G, Cervone F, Caprari C. (2009). Three aspartic acid residues
of polygalacturonase-inhibiting protein (PGIP) from Phaseolus vulgaris are critical for inhibition of
Fusarium phyllophilum PG. Plant Biol (Stuttg), 11(5):738-43.
37) Mattei B, Sabatini S, Schininà ME (2013). Proteomics in deciphering the auxin commitment in the
Arabidopsis thaliana root growth. Journal of Proteome Research, 12: 4684-4701.
38) Licursi V, Salvi C, De Cesare V, Rinaldi T, Mattei B, Fabbri C, Serino G, Bramasole L, Zimbler J,
Pick E, Barnes B, Bard M, Negri R (2014) The Cop9 signalosome is involved in the regulation of lipid
metabolism and of transition metals uptake in S. cerevisiae. FEBS J. 281(1): 175-90.
COMUNICAZIONI A CONGRESSI
1) G. De Lorenzo, F. Cervone, B. Aracri, D. Bellincampi, C. Caprari, A.J. Clark, A. Devoto, F. Leckie,
B. Mattei, L. Nuss and G. Salvi (1996). “Polygalacturonase-inhibiting proteins (PGIPs): plant cell wall
proteins specialized for pathogen recognition. In: The extracellular matrix of plants: molecular, cellular and
developmental biology. Keystone Symposium. Tamarron (U.S.A.) 15-21 marzo 1996.
2) F. Cervone, G. De Lorenzo, B. Aracri, D. Bellincampi, C. Caprari, A.J. Clark, A. Devoto, F. Leckie,
B. Mattei, L. Nuss and G. Salvi (1996). “The interaction between fungal endopolygalacturonases and
polygalacturonase-inhibiting proteins (PGIPs). In: Molecular genetics of fungal plant pathogens & Signal
perception and transduction in plant-fungus interactions. Human Capital and Mobility Workshop. Cordoba
(Spagna) 27-30 aprile 1996.
3) B. Mattei, Caprari C., Salvi G., De Lorenzo G., Crescenzi V., Cervone F. (1996). “Analysis of the
interaction between Phaseolus PGIP and fungal endopolygalacturonases using biosensor technology”. XI
Convegno Nazionale Proteine 96. Siena 29-31 maggio 1996.
4) F. Cervone, G. De Lorenzo, B. Aracri, D. Bellincampi, C. Caprari, A. Devoto, F. Leckie, B. Mattei,
L. Nuss, G. Salvi (1996). “La poligalatturonasi, le PGIP e gli oligogalatturonidi nelle interazioni fra piante e
funghi fitopatogeni”. IX Incontro su: Aspetti Molecolari e Fisiologici delle Interazioni Pianta-Patogeno .
Ragusa Ibla (Ragusa) 31 maggio 1 giugno 1996.
5) F. Cervone, G. De Lorenzo, B. Aracri, D. Bellincampi, C. Caprari, A. Devoto, F. Leckie, B. Mattei
L. Nuss, G. Salvi (1996). “The PGIP (Polygalacturonase-inhibiting protein) family: extracellular proteins
specialized for recognition”. 8th International Congress on Molecular Plant-Microbe Interactions.
Knoxwille Tennessee (USA), 14-19 luglio 1996.
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Roma, 25/02/2014
M. Benedetta Mattei