Napsin A (MRQ-60) - Menarini Diagnostics

Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
Identificazione Prodotto
N° Catalogo
44723
44351
44722
Descrizione
Napsin A 1 M (MRQ-60)
Napsin A RTU M (MRQ-60)
Napsin A 0,1 M (MRQ-60)
Definizione Dei Simboli
P
pronto uso
C
concentrato
A
asciti
E
siero
S
supernatante
DIL
DOC#
DIS
range di diluizione di concentrato
numero documento
distribuito da
Finalità D’Uso
Questo anticorpo è destinato per l’uso
diagnostico in vitro (IVD).
Anticorpo Napsin A è indicato per i laboratori
qualificati per l’identificazione qualitativa
tramite microscopio ottico della presenza di
antigeni associati in sezioni di tessuto fissate
in formalina e incluse in paraffina utilizzando
metodi di test IHC (immunoistochimici).
L’uso di questo anticorpo è indicato, in
seguito a diagnosi clinica differenziale di
patologie, come ausilio per l’identificazione
dell’iperespressione della proteina napsin A
in alcuni adenocarcinomi del polmone nel
contesto di pannelli di anticorpi, dell’anamnesi
clinica del paziente e di altri test diagnostici
esaminati da un patologo esperto.
Sommario E Spiegazione
Napsin A è una proteasi aspartica funzionale
espressa nel parenchima polmonare normale
di pneumociti di tipo II e nei tubuli prossimali
e convoluti del rene. È presente nei lisosomi di
pneumociti di tipo II e nei macrofagi alveolari
(probabilmente secondari a fagocitosi) e,
in misura minore, negli acini e nei dotti
pancreatici. È espressa nel citoplasma ed
è fortemente positiva nell’80% dei casi
di adenocarcinoma polmonare primario. I
carcinomi a cellule squamose e i carcinomi a
piccole cellule del polmone sono solitamente
negativi per napsin A. Gli adenocarcinomi,
compresi quelli di mammella, pancreas, tratto
biliare e colon, raramente si colorano con l’antinapsin A.1-5 L’adenocarcinoma polmonare con
differenziazione enterica (PAED) è un caso
speciale in quanto essenzialmente nessuno di
questi casi è marcato con l’anticorpo diretto
contro napsin A.3
Principi E Procedure
L’anticorpo primario citato può essere utilizzato
quale anticorpo primario per la colorazione
immunoistochimica delle sezioni di tessuto
fissate in formalina e incluse in paraffina. In
generale, la colorazione immunoistochimica
insieme al sistema di rilevazione biotinastreptavidina consente la visualizzazione degli
antigeni tramite l’applicazione sequenziale
di un anticorpo specifico (anticorpo primario)
all’antigene, di un anticorpo secondario
(anticorpo di collegamento) all’anticorpo
primario, un complesso enzimatico e un
substrato cromogeno con fasi di lavaggio
interposte. In alternativa può essere utilizzato
un sistema di rilevamento privo di biotina.
L’attivazione enzimatica del cromogene causa
la produzione di una reazione visibile sul sito
dell’antigene. Il campione può essere quindi
contro colorato ed è possibile applicarvi del
copri vetrino. I risultati vengono interpretati
utilizzando un microscopio ottico e consentono
la diagnosi differenziale dei processi patofisiologici, associabili o meno a un particolare
antigene.
I prodotti prediluiti sono diluiti in modo
ottimale per l’uso con un’ampia varietà di kit di
rivelazione offerti da altri produttori.
Materiali E Metodi
Per i dettagli specifici dei lotti dei seguenti, fare
riferimento all’etichetta del prodotto:
1.
Concentrazione di immunoglobulina
dell’anticorpo
2. Dettagli sull’origine
DIS A.Menarini Diagnostics S.r.l.
Via Sette Santi, 3
50131 Firenze
Italy
DOC# MEN35229000
IT Rev. 0,0
Cell Marque Corporation
6600 Sierra College Blvd
Rocklin
California 95677
USA
EMERGO EUROPE
Molenstraat 15, 2513 BH
The Hague
NL
Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
16. Reagente di controllo negativo
Reagenti Forniti
17. Soluzione montante
Prediluito Il prodotto anticorpo primario citato contiene il reagente pronto
per l’uso.
18. Copri vetrino
19. Microscopio ottico (40-400x)
Il tasso di concentrazione di immunoglobuline prediluite per questo
prodotto è di 0,5-5 µg/ml.
Conservazione E Manipolazione
Conservare a 2-8 °C. Non congelare.
Concentrato Il prodotto anticorpo primario citato contiene reagente
concentrato.
Per garantire un’erogazione adeguata di reagente e la stabilità dell’anticorpo
dopo ciascuna analisi, riposizionare il tappo e riporre immediatamente il
flacone in frigorifero in posizione verticale.
Sia il formato prediluito sia quello concentrato di questo anticorpo sono
diluiti in Tampone Tris, pH 7,3-7,7, con BSA 1% e azoturo di sodio <0,1%.
Ogni reagente di anticorpi è provvisto di data di scadenza. Se conservato
adeguatamente, il reagente resta stabile fino alla data indicata sull’etichetta.
Non utilizzare il reagente oltre la data di scadenza relativa al metodo di
conservazione indicato.
Il tasso di concentrazione di immunoglobulina concentrata per questo
prodotto è di 110-210 µg/ml.
La gamma operativa di diluizione raccomandata per il prodotto
concentrato è di 1:100-1:500 e si trova sull’etichetta del prodotto.
Non vi sono segni evidenti che indichino l’instabilità di questo prodotto.
Pertanto, è consigliabile eseguire contemporaneamente controlli positivi
e negativi sui campioni da testare. Contattare il Servizio Clienti A.Menarini
Diagnostics in caso di segni sospetti d’instabilità del reagente.
Isotipo: IgG1/k
Ricostituzione, Miscelazione, Diluizione, Titolazione
L’anticorpo prediluito è pronto all’uso e ottimizzato per la colorazione. Non
è necessaria alcuna ricostituzione, miscelazione, diluizione o titolazione.
L’anticorpo concentrato è ottimizzato per essere diluito entro il range di
diluizione.
Prelievo Di Campioni E Preparazione Per L’Analisi
I tessuti ordinariamente trattati, fissati in formalina tamponati neutri,
inclusi in paraffina sono adatti all’uso con questo anticorpo primario. Il
fissativo consigliato per i tessuti è formalina neutra tamponata al 10%. È
possibile che si ottengano risultati variabili dovuti a processi di fissaggio
prolungati o speciali come la decalcificazione di preparati di midollo osseo.
L’utente deve convalidare la diluizione operativa del prodotto concentrato.
Differenze nelle procedure tecniche e nel trattamento del tessuto in
laboratorio possono produrre importanti variabilità nei risultati e richiedere
di conseguenza l’uso regolare di controlli (fare riferimento alla sezione
Procedure di controllo della qualità).
Materiali E Reagenti Necessari Ma Non Forniti
Ogni sezione va tagliata per garantire uno spessore adeguato (circa 3
μm) e posizionata su un vetrino con carica positiva. I vetrini contenenti la
sezione di tessuto possono essere cotti per almeno 2 ore (ma non oltre le
24 ore) in un forno a una temperatura di 58-60 °C ± 5 °C.
I seguenti reagenti e materiali possono essere necessari per la colorazione
ma non sono forniti con l’anticorpo primario:
Avvertenze E Precauzioni
1. 1.
Tessuto di controllo positivo e negativo
2. Vetrini per microscopio, caricati positivamente
3. Forno per essicazione in grado di mantenere una temperatura di 5860 °C ± 5 °C
2. Evitare il contatto di reagenti con occhi e membrane di mucose.
Se i reagenti vengono a contatto con aree sensibili, lavare con
abbondante acqua corrente.
4. Ampolle o bagni di colorante
5. Timer
3.
6. Xilene o sostituto di xilene
7. Etanolo o alcool reagente
8.
Acqua deionizzata o distillata
9.
Pentola a pressione elettrica per la fase di pretrattamento del tessuto
Manipolando i reagenti adottare ragionevoli precauzioni. Quando
si manipolano materiali sospetti carcinogeni o tossici (ad esempio
xilene) servirsi di guanti monouso e di grembiuli di laboratorio.
I campioni dei pazienti e tutti i materiali che entrano a contatto con
loro devono essere manipolati come materiali a rischio biologico e
smaltiti con adeguate precauzioni. Non pipettare mai con la bocca.
4. Evitare la contaminazione microbica di reagenti, per non causare
risultati scorretti.
10. Sistema di rilevamento e cromogeno
11. Soluzioni per lavaggio
5. L’utente è tenuto a convalidare i tempi di incubazione e le
temperature.
12. Ematossilina o altro contro colorante
6.
13. Diluenti di anticorpi
14. Blocco perossido per uso con HRP
15. Blocco avidina-biotina
2
MEN Template #0.2
I reagenti prediluiti, pronti all’uso sono stati diluiti in modo ottimale
e un’ulteriore diluizione può causare una perdita di colorazione
antigenica.
Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
7.
I reagenti concentrati possono essere diluiti in modo ottimale in
base alla convalida dell’utente. Qualsiasi diluente utilizzato non
specificatamente raccomandato da questo documento deve essere
quindi convalidato dall’utente sia per la compatibilità sia per l’effetto
sulla stabilità.
da un’autopsia recente, da una biopsia o da campioni chirurgici preparati
o fissati prima possibile, in modo identico alle sezioni da esaminare. L’uso
di una sezione di tessuto fissata o trattata diversamente dai campioni da
esaminare, servirà per fornire un controllo di tutti i reagenti e le fasi del
metodo, eccetto il fissaggio e il trattamento del tessuto.
8.
Se utilizzato secondo le istruzioni il prodotto non è classificato come
sostanza pericolosa. Il conservante nel reagente è azoturo di sodio
in misura inferiore allo 0,1% e alle concentrazioni dichiarate non
soddisfa i criteri UE REACH (registrazione, valutazione, autorizzazione
e restrizione delle sostanze chimiche) per le sostanze pericolose.
Un tessuto con una colorazione positiva debole è più indicato per
effettuare un controllo ottimale della qualità e per rilevare livelli minori
di degradazione del reagente. Il controllo tissutale positivo per l’anticorpo
primario citato, può comprendere quanto segue:
9. L’utente deve convalidare qualunque condizione di conservazione
diversa da quelle specificate nel foglietto illustrativo.
Controllo Positivo Del Tessuto
10. Il diluente può contenere albumina di siero bovino e il supernatante
può contenere siero bovino. I prodotti contenenti siero bovino fetale
e i prodotti contenenti albumina di siero bovino vengono acquistati
presso fornitori commerciali. I certificati di origine della sorgente
animale utilizzata in questi prodotti sono nell’archivio di Cell Marque.
I certificati sostengono che le origini bovine provengono da Paesi che
presentano un rischio trascurabile di BSE e dichiarano che le origini
bovine sono statunitensi e canadesi.
Protocollo di colorazione raccomandato per l’anticorpo primario citato:
Colorazione Manuale
Deparaffinizzazione, reidratazione e recupero dell’epitopo; il metodo
preferito è l’utilizzo delle tecniche di smascheramento termoindotto
dell’epitopo (HIER, Heat Induced Epitope Retrieval). Il metodo
preferito consente nello stesso tempo la deparaffinizzazione, la
reidratazione e il recupero dell’epitopo. Al termine, sciacquare 5 volte
con acqua distillata o deionizzata.
3.
Applicare l’anticorpo e incubare per 10 - 30 minuti, quindi sciacquare.
Citoplasmatico
Carcinoma delle cellule renali
Citoplasmatico
Per il controllo negativo del tessuto, è possibile impiegare lo stesso
tessuto utilizzato per il controllo positivo del tessuto. La varietà di tipi di
cellule presenti nella maggior parte delle sezioni dei tessuti forniscono
siti di controllo negativi, che devono essere tuttavia verificati dall’utente.
I componenti che non si colorano devono dimostrare l’assenza di
colorazione specifica e fornire un’indicazione sulla colorazione di fondo
non specifica. Se è presente una colorazione specifica nei siti di controllo
negativi del tessuto, i risultati con i campioni del paziente devono essere
considerati non validi.
Procedura Passo-Passo
Se si utilizza un sistema di rilevamento HRP, collocare i vetrini in un
bloccante perossido per 10 minuti, quindi sciacquare. Se si utilizza un
sistema di rilevamento AP, saltare questo passaggio.
Citoplasmatico
Rene
Controllo Negativo Del Tessuto
Istruzioni Per L’uso
2.
Visualizzazione
Adenocarcinoma dei polmoni
Utilizzare i controlli positivi noti solo per monitorare le adeguate
prestazioni dei tessuti trattati e dei reagenti del test, non come aiuto per
formulare una diagnosi specifica dei campioni del paziente. Se i controlli
positivi del tessuto non si colorano positivamente in modo adeguato, i
risultati con i campioni da esaminare devono essere considerati non validi.
11. Come per qualsiasi prodotto derivato da sorgenti biologiche, è
necessario seguire procedure corrette di manipolazione.
1.
Tessuto
Discrepanze Inspiegabili
4. Per la rivelazione del polimero in 2 fasi, il sistema applica
l’amplificatore in base alle istruzioni del produttore
Segnalare immediatamente all’assistenza clienti di A.Menarini Diagnostics
tutte le discrepanze inspiegabili rilevate nei controlli. Se i risultati del
controllo di qualità non soddisfano le specifiche, i risultati del paziente
non sono validi. Vedere la sezione Risoluzione dei problemi di questo
inserto. In tal caso, è necessario identificare e correggere il problema e
ripetere l’intera procedura con i campioni del paziente.
5. Applicare il reagente di rivelazione per il numero di minuti
raccomandato dal produttore, quindi sciacquare.
Reagente Di Controllo Negativo
6.
Applicare una quantità generosa di cromogeno e incubare per 1 - 10
minuti, quindi sciacquare.
7.
Disidratare e applicare il vetrino coprioggetto.
È necessario eseguire un controllo negativo del reagente per ciascun
campione per riuscire a interpretare meglio i risultati. Per valutare
colorazioni non specifiche viene utilizzato un controllo negativo del
reagente invece dell’anticorpo primario. Il vetrino dovrà essere trattato
con controllo negativo del reagente, abbinandosi alle specie ospiti
dell’anticorpo primario e avendo idealmente la stessa concentrazione
di IgG. Il periodo di incubazione del reagente di controllo negativo deve
essere uguale a quello dell’anticorpo primario.
Procedure Di Controllo Della Qualità
Controllo Positivo Del Tessuto
È necessario effettuare un controllo positivo del tessuto per ciascuna
procedura di colorazione eseguita. Il tessuto può contenere sia cellule che
componenti con colorazione positiva e negativa e serve sia come tessuto
di controllo positivo che negativo. I tessuti di controllo devono provenire
3
MEN Template #0.2
Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
Interpretazione Dei Risultati
tessuti, fissaggio, trattamenti; della preparazione del vetrino per
immunoistochimica e dell’interpretazione dei risultati di colorazione.
La procedura di immunostaining causa la precipitazione di un prodotto di
reazione colorato ai siti antigenici localizzati dall’anticorpo primario. Fare
riferimento al foglietto illustrativo del sistema di rilevamento per reazioni
del colore previsto. È opportuno che un patologo qualificato esperto in
procedure immunoistochimiche valuti i controlli su tessuti positivi e
negativi prima di interpretare i risultati.
2.
Ad uso esclusivo di laboratorio.
3.
Esclusivamente per uso diagnostico in vitro.
4. La colorazione del tessuto dipende dalla manipolazione e
dal trattamento precedenti del tessuto. Fissaggio inadeguato,
congelamento, scongelamento, lavaggio, asciugatura, riscaldamento,
sezionamento o contaminazione con altri tessuti o fluidi possono
produrre artefatti, l’intrappolamento dell’anticorpo o risultati falsonegativi. Variazioni nel fissaggio e nei metodi di inclusione, come
anche le irregolarità intrinseche del tessuto possono provocare
risultati non uniformi.
Controllo Positivo Del Tessuto
Esaminare prima il controllo positivo del tessuto colorato per determinare
se tutti i reagenti funzionano correttamente. La presenza di un prodotto
di reazione con colorazione appropriata nelle cellule target indica una
reattività positiva. Fare riferimento al foglietto illustrativo del sistema
di rilevamento per reazioni del colore previsto. A seconda della durata
del periodo di incubazione e della potenza dell’ematossilina utilizzata,
la contro colorazione darà luogo ad una colorazione da azzurro chiaro
a blu scuro nei nuclei delle cellule. Una contro colorazione eccessiva o
incompleta può compromettere l’interpretazione corretta dei risultati. Se
il controllo positivo del tessuto non si colora positivamente, i risultati con i
campioni da esaminare sono considerati non validi.
5.
Una contro colorazione eccessiva o incompleta può compromettere
l’interpretazione corretta dei risultati.
6. L’interpretazione clinica di ogni colorazione positiva, o della
sua assenza, deve essere valutata in un contesto anamnestico,
morfologico e di altri criteri istopatologici, oltre che di altri test
diagnostici. Questo anticorpo è destinato a essere utilizzato in un
pannello di anticorpi, secondo il caso. Spetta al patologo qualificato
assicurarsi di conoscere adeguatamente gli anticorpi, i reagenti, i
pannelli diagnostici e i metodi utilizzati per produrre la preparazione
colorata. È necessario eseguire la colorazione in un laboratorio
certificato e autorizzato sotto la supervisione di un patologo
responsabile della revisione dei vetrini colorati che garantisca
l’adeguatezza dei controlli positivi e negativi.
Controllo Negativo Del Tessuto
Dopo il controllo positivo del tessuto, è necessario esaminare quello
negativo per verificare la marcatura specifica dell’antigene target
dall’anticorpo primario. L’assenza di colorazione specifica nel controllo
negativo del tessuto conferma l’assenza di reattività crociata tra l’anticorpo
e le cellule o i componenti cellulari. Se si nota una colorazione specifica
nel controllo negativo del tessuto, i risultati con i campioni del paziente
sono considerati non validi. La colorazione non specifica, se presente, sarà
diffusa. Nelle sezioni di tessuto che non sono fissate in maniera ottimale,
il tessuto connettivo potrebbe presentare una lieve colorazione sporadica.
In questo caso è necessario utilizzare le cellule intatte per interpretare i
risultati della colorazione. Le cellule necrotiche o degenerate mostrano
una colorazione non specifica.
7.
Anticorpi e reagenti pronti all’uso sono forniti in diluizione ottimale
per un utilizzo conforme a quanto specificato nelle istruzioni.
Qualsiasi deviazione dalle procedure di analisi raccomandate
può inficiare i risultati. È indispensabile utilizzare e documentare
controlli appropriati. Gli utenti che comunque modificano le
procedure di analisi consigliate si assumono ogni responsabilità per
l’interpretazione dei risultati.
8. Si forniscono prodotti concentrati in modo che l’utente possa
successivamente diluirli in maniera ottimale per l’uso previsto nel
rispetto di tecniche di validazione adeguate. Gli utenti sono tenuti
a convalidare l’utilizzo di eventuali diluenti diversi da quelli qui
raccomandati. Dopo la convalida degli anticorpi primari per l’uso,
qualsiasi deviazione dalle procedure di analisi raccomandate può
inficiare i risultati previsti. È indispensabile utilizzare e documentare
controlli appropriati. Gli utenti che comunque modificano le
procedure di analisi consigliate si assumono ogni responsabilità per
l’interpretazione dei risultati.
Tessuto Del Paziente
I campioni del paziente devono essere esaminati per ultimi. L’intensità
della colorazione positiva dovrà essere valutata nel contesto di qualsiasi
colorazione di fondo del controllo negativo del reagente. Come in
qualsiasi altro test immunoistochimico, un risultato negativo indica che
l’antigene in questione non è stato rilevato, non che l’antigene è assente
nelle cellule o nei tessuti esaminati. Un pannello di anticorpi può aiutare
nell’identificazione di false reazioni negative (vedere la sezione Sintesi dei
risultati previsti). È necessario anche esaminare la morfologia di ciascun
campione del tessuto utilizzando una sezione colorata con ematossilina
ed eosina durante l’interpretazione dei risultati immunoistochimici. I
risultati morfologici del paziente e i dati clinici pertinenti devono essere
interpretati da un patologo qualificato.
9.
Questo prodotto non è destinato all’uso nella citometria a flusso.
10. I reagenti possono presentare reazioni inattese in tessuti non
precedentemente testati. La possibilità di reazioni inattese anche in
gruppi di tessuti già testati non può essere eliminata completamente
a causa della variabilità biologica dell’espressione dell’antigene
in neoplasie o in altri tessuti patologici. In caso di reazioni
sospette, inattese documentate, contattare l’assistenza clienti di
A.Menarini Diagnostics.
Limitazioni
11. I tessuti di persone infette dal virus di epatite B e contenenti
antigene di superficie dell’epatite B (HBsAg) possono evidenziare una
colorazione non specifica con perossidasi di rafano.
1. Questo reagente è esclusivamente per uso professionale dal
momento che l’immunoistochimica è un processo a fasi multiple che
richiede una formazione specialistica per la scelta adeguata di reagenti,
12. Se utilizzati in fasi di bloccaggio, i normali sieri della stessa origine
animale, come l’antisiero secondario, possono causare risultati
positivi o negativi falsi a causa dell’effetto degli autoanticorpi o degli
anticorpi naturali.
4
MEN Template #0.2
Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
13. È possibile che si ottengano falsi risultati positivi a causa di legami
non immunologici di proteine o di prodotti di reazione al substrato.
Essi possono anche essere causati dall’attività di pseudoperossidasi
(eritrociti), attività di perossidasi endogena (citocromo C) o di biotina
endogena (ad esempio: fegato, cervello, seno, rene) in base al tipo di
tecnica di immunostaining utilizzata.
Studio Normale (continuato)
Casi
Positivi
Totale
di Casi
Testato
Rene
3
3
Vescica
0
1
Prostata
0
2
Utero
0
2
Tuba di Falloppio
0
1
Uretere
0
1
Cervice
0
1
I prodotti di anticorpi prediluiti sono ottimizzati come prodotti
pronti all’uso. A causa della possibilità di variazione nella fissazione e
nel trattamento dei tessuti, potrebbe essere necessario aumentare
o diminuire il tempo di incubazione dell’anticorpo primario su
campioni singoli.
Muscolo scheletrico
0
1
Muscolo liscio
0
1
Cute
0
1
Nervo periferico
0
1
Mesotelio
0
1
L’anticorpo, se utilizzato in combinazione con sistemi di rilevazione
e relativi accessori, rileva antigeni che sopravvivono al normale
fissaggio in formalina, al trattamento del tessuto e al sezionamento.
Gli utenti che si discostano delle procedure di analisi consigliate
sono responsabili per l’interpretazione e la convalida dei risultati,
esattamente come in qualsiasi altra circostanza.
Adipe
0
1
Placenta
0
1
Tessuto
14. Come in qualsiasi altro test immunoistochimico, un risultato negativo
indica che l’antigene in questione non è stato rilevato, non che
l’antigene è assente nelle cellule o nei tessuti esaminati.
Limitazioni Specifiche
1.
2.
Note
Questo anticorpo colora numerosi tessuti normali, come indicato nella
documentazione. Questo anticorpo non reagisce con la mucosa colonica.
Studio Su Tessuto Malato
Casi
Positivi
Totale
di Casi
Testato
Carcinoma delle cellule renali
2
10
Carcinoma neuroendocrino del
polmone
0
3
Carcinoma duttale invasivo
della mammella
0
14
Carcinoma colorettale
0
22
Carcinoma della prostata
0
5
Carcinoma del pancreas
0
5
Carcinoma delle cellule
transizionali
0
5
Mesotelioma
0
3
Melanoma
0
1
Carcinoma embrionale
0
1
Adenocarcinoma dei polmoni
10
12
Sintesi Dei Risultati Previsti
Tessuto
Consultare le seguenti tabelle di reattività:
Studio Normale
Tessuto
Casi
Positivi
Totale
di Casi
Testato
Cervello
0
1
Corteccia surrenale
0
1
Ovaia
0
1
Pancreas
0
1
Paratiroide
0
1
Pituitaria
0
1
Testicolo
0
1
Tiroide
0
1
Seno
0
2
13
0
1
Carcinoma squamoso del
polmone
0
Milza
Tonsilla
0
1
Carcinoma ovarico sieroso
0
3
Timo
0
1
Midollo osseo
0
1
Polmone
2
2
Cuore
0
1
Esofago
0
1
Stomaco
0
1
Intestino tenue
0
1
Colon
0
1
Fegato
0
1
Ghiandola salivare
0
1
Cistifellea
0
1
Note
Studi interni mostrano che l’anticorpo monoclonale murino diretto
contro Napsin A (MRQ-60) non presenta una colorazione citoplasmatica
punteggiata nella mucosa colonica, altrimenti osservata con l’anticorpo
policlonale di coniglio diretto contro Napsin A.
Risoluzione Dei Problemi
1.
5
MEN Template #0.2
Note
Se il controllo positivo mostra una colorazione più debole del
previsto, controllare altri controlli positivi eseguiti durante la stessa
Napsin A (MRQ-60)
Mouse Monoclonal Antibody
colorazione per determinare se il problema dipende dall’anticorpo
primario o da uno dei reagenti secondari comuni.
2. Se il controllo positivo è negativo, è necessario controllare altri
controlli positivi esaminati durante la stessa analisi per determinare
se la causa dipende dall’anticorpo primario o da uno dei reagenti
secondari comuni. È possibile che i tessuti siano stati prelevati,
fissati o deparaffinizzati in modo inappropriato. Seguire la procedura
appropriata per prelevare, conservare e fissare i campioni.
3.
Se si presenta un’eccessiva colorazione di fondo, possono essere
presenti livelli elevati di biotina endogena. Una fase bloccante
di biotina dovrà essere inclusa a meno che non sia utilizzato un
sistema di rilevamento privo di biotina; in questo caso la presenza
di biotina non rappresenterebbe un fattore che contribuisce alla
colorazione di fondo.
4. Se non è stata rimossa tutta la paraffina, è necessario ripetere
l’operazione di deparaffinazione.
5.
Se le sezioni di tessuto ripuliscono il vetrino, controllare i vetrini per
accertarsi che siano caricati positivamente. Tra le altre possibilità
che potrebbero pregiudicare l’adesione del tessuto vi sono un
insufficiente essiccamento della sezione di tessuto sul vetrino
prima della colorazione o un fissaggio in formalina neutra non
adeguatamente tamponato. Anche lo spessore del tessuto potrebbe
essere un fattore che contribuisce.
Per azioni correttive, fare riferimento alla sezione Procedura passo-passo,
o contattare il servizio clienti A.Menarini Diagnostics.
Bibliografia
1
2
3
4
5
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6
MEN Template #0.2